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MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)

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   北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司成立于2002年,為中關(guān)村高新技術(shù)企業(yè),致力于生態(tài)-農(nóng)業(yè)-健康研究監(jiān)測技術(shù)推廣、研發(fā)與服務(wù),特別是在光譜成像技術(shù)(高光譜成像技術(shù)、葉綠素?zé)晒獬上窦夹g(shù)、紅外熱成像技術(shù)、無人機(jī)遙感等)、植物表型分析技術(shù)、呼吸與能量代謝測量技術(shù)等方面,與專業(yè)企業(yè)PSI、Specim、Sable等合作,致力于植物科學(xué)、土壤與地球科學(xué)、動物能量代謝、水體與藻類及生態(tài)環(huán)境領(lǐng)域先進(jìn)儀器技術(shù)的引進(jìn)推廣和技術(shù)研發(fā)集成,為植物/作物表型分析、生態(tài)修復(fù)及生態(tài)保護(hù)、能量代謝測量等提供規(guī)劃設(shè)計(jì)、技術(shù)方案與系統(tǒng)集成、技術(shù)咨詢與科技服務(wù)。公司技術(shù)團(tuán)隊(duì)80%以上具備碩士或碩士以上學(xué)位,并與*研究生院、中科院植物研究所、中科院動物所、中科院地理科學(xué)與資源研究所、中國農(nóng)科院、中國林科院、中國環(huán)科院、中國水科院、清華大學(xué)、中國農(nóng)業(yè)大學(xué)、北京林業(yè)大學(xué)、北京大學(xué)、中國海洋大學(xué)、陜西師范大學(xué)、內(nèi)蒙古大學(xué)等建立了長期的技術(shù)合作交流關(guān)系。


   公司下設(shè)有葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)與植物表型業(yè)務(wù)部、EcoTech®實(shí)驗(yàn)室、光譜成像與無人機(jī)遙感事業(yè)部及無人機(jī)遙感研究中心(與陜西師范大學(xué)合作建立)、動物能量代謝實(shí)驗(yàn)室、內(nèi)蒙古阿拉善蒙古牛生態(tài)牧業(yè)研究院及青島分公司。實(shí)驗(yàn)室擁有葉綠素?zé)晒獬上?、葉綠素?zé)晒鈨x、水體藻類熒光儀、SPECIM高光譜儀、WORKSWELL紅外熱成像儀、EasyChem全自動化學(xué)分析儀、MicroMac1000水質(zhì)在線監(jiān)測系統(tǒng)、ACE土壤呼吸自動監(jiān)測系統(tǒng)、SoilBox便攜式土壤氣體通量測量系統(tǒng)、動物呼吸測量系統(tǒng)、LCpro 光合作用測量儀、Hood土壤入滲儀、年輪分析儀等各種儀器設(shè)備,可以進(jìn)行實(shí)驗(yàn)研究分析、實(shí)驗(yàn)培訓(xùn)等,歡迎與易科泰生態(tài)研究室開展合作研究。


   易科泰公司與歐洲PSI公司(葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)與表型分析技術(shù))、美國SABLE公司(動物能量代謝技術(shù))、歐洲SPECIM公司(高光譜成像技術(shù))、歐洲WORKSWELL公司(紅外熱成像技術(shù))、歐洲ATOMTRACE公司(LIBS元素分析技術(shù))、歐洲BCN無人機(jī)遙感中心、歐洲ITRAX公司(樣芯密度掃描與元素分析)、美國VERIS公司、英國ADC公司、德國UGT公司、歐洲SYSTEA公司等著名生態(tài)儀器技術(shù)領(lǐng)域的研發(fā)機(jī)構(gòu)和廠商建立了密切的合作關(guān)系,在FluorCam葉綠素?zé)晒獬上衽c熒光測量技術(shù)、PlantScreen植物表型分析技術(shù)、高光譜成像技術(shù)、紅外熱成像技術(shù)、光合作用與植物生理生態(tài)研究監(jiān)測、土壤呼吸與碳通量研究監(jiān)測、動物呼吸代謝測量、水質(zhì)分析與藻類研究監(jiān)測、CoreScanner樣芯密度CT與元素分析技術(shù)、LIBS元素分析技術(shù)、無人機(jī)生態(tài)遙感技術(shù)等生態(tài)儀器技術(shù)及其系統(tǒng)方案集成有著豐富的經(jīng)驗(yàn),成為我國農(nóng)業(yè)、林業(yè)、地球科學(xué)、生態(tài)環(huán)境研究等領(lǐng)域科技進(jìn)步的重要研究技術(shù)支持力量。由公司研制生產(chǎn)的EcoDrone®無人機(jī)遙感平臺、SoilTron®多功能小型蒸滲儀技術(shù)、SoilBox®土壤呼吸測量技術(shù)、PhenoPlot®輕便型作物表型分析系統(tǒng)、SCG-N土壤剖面CO2/O2梯度監(jiān)測系統(tǒng)、植物生理生態(tài)監(jiān)測技術(shù)、動物能量代謝測量技術(shù)等,在中科院修購項(xiàng)目、*學(xué)科群項(xiàng)目、CERN網(wǎng)絡(luò)(生態(tài)系統(tǒng)監(jiān)測網(wǎng)絡(luò))等項(xiàng)目中發(fā)揮重要作用。


   “工欲善其事,必先利其器”,易科泰公司將秉承“利其器,善其事”的經(jīng)營理念,為國內(nèi)生態(tài)-農(nóng)業(yè)-健康研究與發(fā)展提供優(yōu)秀的技術(shù)方案和服務(wù)。


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土壤與植物生理生態(tài)研究監(jiān)測、環(huán)境氣象監(jiān)測、水文水質(zhì)及地下水監(jiān)測、水土保持研究監(jiān)測、荒漠化監(jiān)測、精準(zhǔn)農(nóng)業(yè)以及動物生態(tài)研究等儀器技術(shù)的引進(jìn)推廣和系統(tǒng)集成,并為生態(tài)環(huán)境實(shí)驗(yàn)研究和規(guī)劃設(shè)計(jì)提供技術(shù)方案和分析測量。

產(chǎn)地類別 進(jìn)口 價格區(qū)間 5千-1萬
應(yīng)用領(lǐng)域 醫(yī)療衛(wèi)生,環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)林牧漁

 

MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)

 

  果蠅作為經(jīng)濟(jì)實(shí)用的模式動物,可用于中樞神經(jīng)系統(tǒng)紊亂、炎癥性病變、心血管疾病、癌癥以及糖尿病等治療研究,而這些疾病的發(fā)生從生理上來說都與生物個體長期的代謝功能異常密切相關(guān)。

  MAVEn™高通量16通道果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)是由世界的美國Sable Systems International動物代謝測量公司生產(chǎn)的一款16通道、高分辨率及自動化的果蠅代謝監(jiān)測儀器,可廣泛用于代謝紊亂造成的各種流行疾病治療的機(jī)理研究。

MAVEn™果蠅代謝系統(tǒng)作為果蠅代謝分型監(jiān)測方面應(yīng)用很廣泛的產(chǎn)品,主要具備以下特點(diǎn):

  1.  改變了傳統(tǒng)的單只果蠅的封閉或半封閉式測量模式,實(shí)現(xiàn)每個測量室都有
      實(shí)時氣流通過的*開放式測量,避免了測量時內(nèi)出現(xiàn)缺氧(hypoxia)
      或高碳酸血癥(hypercapnia),可一次測量多達(dá)16只個體。

  2.  15秒就可以完成一只果蠅的代謝監(jiān)測,這代表了目前技術(shù)能達(dá)到的極限。

  3.  數(shù)據(jù)可以通過SD卡把帶時間標(biāo)簽的CSV格式直接導(dǎo)出到電腦。

  4.  可選配FLIC果蠅覓食、AD-2果蠅活動、氣體(氧氣、二氧化碳、水汽以
      及其它可檢測氣體)等監(jiān)測單元。

  5.  參考文獻(xiàn)多,高達(dá)4萬多篇,屬于前沿科技。

具體性能指標(biāo):

  1.  氣流流速:5毫升/分鐘-200毫升/分鐘,質(zhì)量流量計(jì),PID精確控制,精度
      為2%。
  2.  昆蟲測量時間:15秒-3小時可程序化選擇;基線測量時間:15秒-3小時可
      程序化選擇。
  3.  氣壓測量:分辨率1Pa,精度0.05%。
  4.  光照水平:0.1-5000勒克斯。
  5.  溫度測量:0-50℃,分辨率0.01℃,精度±0.25℃。
  6.  模擬輸入:6個模擬輸入,16bit分辨率,-5至+5伏電壓信號,可接SSI其
      它儀器或?qū)嶒?yàn)室其它氣體分析儀等。
  7.  數(shù)據(jù)格式:CSV格式;數(shù)據(jù)存儲:SD卡,大支持32G的SD卡。
  8.  雙通道高精度差分式氧氣分析測量儀:測量技術(shù):燃料電池原理氧傳感
      器,雙通道;氧氣濃度量程0-100%(用戶可自定義設(shè)置5個級別);差值
      量程±50%;精度0.1%(O2濃度2-100%時);分辨率0.0001%O2;漂移< 
      0.01%每小時(溫度恒定情況下);響應(yīng)時間小于7秒;24小時漂移<0.01%
      ;20分鐘噪音<3ppm RMS;數(shù)字過濾(噪音)0-40秒可調(diào),增幅0.2秒,
      內(nèi)置A/D轉(zhuǎn)換器分辨率16bits;溫度、壓力補(bǔ)償;傳感器溫度測量范圍0-60
      ℃,精度0.2℃,分辨率0.001℃;大氣壓測量分辨率0.0001kPa,精度為
      滿量程的0.05%;適用流量范圍5-2000mL/min;4通道模擬信號輸出(0-5V 
      BNC)可輸出通道1的氧氣濃度,通道2的氧氣濃度,1和2的差值,大氣壓;
      數(shù)字輸出:RS-232;具4行文字LCD顯示屏,帶背光,可同時顯示2個通道
      的氧氣含量和它們的差值,以及大氣壓;*PID(Proportional-
      Integral-Derivative)溫控單元,保證內(nèi)部氧氣傳感器溫度恒定,進(jìn)一
      步提高了氧氣測量的精度和穩(wěn)定性;供電12-24VDC,8A,配交流電適配器
      ;工作溫度:5-45℃,無冷凝;重量6.4kg;尺寸43.2cm×35.6cm×20.3cm


  9.  超高精度二氧化碳分析測量儀:用于測量微小昆蟲(比如果蠅、蚊子
      等)或蜱螨類微小動物的呼吸代謝,可同時測量CO2濃度和H2O濃度;
      CO2量程0-3000ppm;準(zhǔn)確度<1%;分辨率0.01ppm;H2O量程0-60mmol
      /mol;準(zhǔn)確度1%;

  10. 二次抽樣單元:內(nèi)置氣泵、精密針閥、質(zhì)量流量計(jì),可用來給氣流樣本
      做二次抽樣,也可單獨(dú)作為氣源使用;流量范圍5-2000mL/min;精度為
      讀數(shù)的10%;分辨率1mL/min;具備2行顯示LCD顯示屏;帶0-5V BNC模擬
      信號輸出;數(shù)字輸出RS-232;供電12-15VDC,20-350mA,配交流電適配
      器;工作溫度:0-50℃,無冷凝;重量1.5kg;尺寸16cm×13cm×20cm;

 

 

產(chǎn)地:美國

 

文獻(xiàn)案例:

2016年已發(fā)表的果蠅有關(guān)文獻(xiàn)中,使用SSI果蠅代謝監(jiān)測系統(tǒng)的達(dá)14篇,201511篇,截止目前相關(guān)文獻(xiàn)共計(jì)500多篇。

1.    Andrew N R, Ghaedi B, Groenewald B. The role of nest surface temperatures and the brain in influencing ant metabolic rates[J]. Journal of Thermal Biology, 2016, 60: 132-139.

2.    Baaren J, Dufour C M S, Pierre J S, et al. Evolution of lifehistory traits and mating strategy in males: a case study on two populations of a Drosophila parasitoid[J]. Biological Journal of the Linnean Society, 2016, 117(2): 231-240.

3.    Bartholomew N R, Burdett J M, VandenBrooks J M, et al. Impaired climbing and flight behaviour in Drosophila melanogaster following carbon dioxide anaesthesia[J]. Scientific reports, 2015, 5.

4.    Basson C H, Clusella-Trullas S. The behavior-physiology nexus: behavioral and physiological compensation are relied on to different extents between seasons[J]. Physiological and Biochemical Zoology, 2015, 88(4): 384-394.

5.    Bosco G, Clamer M, Messulam E, et al. EFFECTS OF OXYGEN CONCENTRATION AND PRESSURE ON Drosophila melanogaster: OXIDATIVE STRESS, MITOCHONDRIAL ACTIVITY, AND SURVIVORSHIP[J]. Archives of insect biochemistry and physiology, 2015, 88(4): 222-234.

6.    Casas J, Body M, Gutzwiller F, et al. Increasing metabolic rate despite declining body weight in an adult parasitoid wasp[J]. Journal of insect physiology, 2015, 79: 27-35.

7.    Correa Y D C G, Faroni L R A, Haddi K, et al. Locomotory and physiological responses induced by clove and cinnamon essential oils in the maize weevil Sitophilus zeamais[J]. Pesticide biochemistry and physiology, 2015, 125: 31-37.

8.    DeVries Z C, Kells S A, Appel A G. Estimating the critical thermal maximum (CT max) of bed bugs, Cimex lectularius: Comparing thermolimit respirometry with traditional visual methods[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 2016, 197: 52-57.

9.    Dreiss A N, Séchaud R, Béziers P, et al. Social huddling and physiological thermoregulation are related to melanism in the nocturnal barn owl[J]. Oecologia, 2016, 180(2): 371-381.

10.  Duun Rohde P, Krag K, Loeschcke V, et al. A Quantitative Genomic Approach for Analysis of Fitness and Stress Related Traits in a Drosophila melanogaster Model Population[J]. International Journal of Genomics, 2016, 2016.

11.  Fischer K E, Gelfond J A L, Soto V Y, et al. Health effects of long-term rapamycin treatment: the impact on mouse health of enteric rapamycin treatment from four months of age throughout life[J]. PloS one, 2015, 10(5): e0126644.

12.  Groom D J E, Toledo M C B, Welch K C. Wingbeat kinematics and energetics during weightlifting in hovering hummingbirds across an elevational gradient[J]. Journal of Comparative Physiology B, 2016: 1-18.

13.  Gudowska A, Boardman L, Terblanche J S. The closed spiracle phase of discontinuous gas exchange predicts diving duration in the grasshopper, Paracinema tricolor[J]. Journal of Experimental Biology, 2016: jeb. 135129.

14.  Haddi K, Mendes M V, Barcellos M S, et al. Sexual Success after Stress? Imidacloprid-Induced Hormesis in Males of the Neotropical Stink Bug Euschistus heros[J]. PloS one, 2016, 11(6): e0156616.

15.  Haddi K, Oliveira E E, Faroni L R A, et al. Sublethal exposure to clove and cinnamon essential oils induces hormetic-like responses and disturbs behavioral and respiratory responses in Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae)[J]. Journal of economic entomology, 2015: tov255.

 

 



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